Рисунок 3.15 – Процессуальная технологическая схема производства
микрокапсул с бифидобактериями
Исходное сырье, прошедшее входной контроль качества, направляется в производственный цех для получения микрокапсул. На втором этапе производства осуществляют приготовление рабочих растворов и суспензий. Для этого исходное сырье подвергают очистке, при необходимости измельчению. Затем в отдельной ёмкости готовят 50 %-ный водный раствор нетоксичной суспензии полимера при постоянном перемешивании до однородной массы.
Водный 20%-ный раствор танина нагревается при постоянном перемешивании до получения красно-коричневого цвета, затем охлаждается до температуры плюс 4±2 ᵒС.
Приготовленные растворы фильтруются для удаления нерастворённых компонентов и примесей. Далее лиофилизированные бифидобактерии (содержащие в 1 г культуры 1011 живых клеток, с массовой долей влаги 5,4±0,32 %) направляют на процесс диспергирования при температуре плюс 4±2 оС с нетоксичной суспензией полимера в соотношении 1,0:12,0 по общей массе. Процесс диспергирования ведут при постоянном перемешивании со скоростью вращения мешалки 50 об/мин в течение 25–35 мин до образования в растворе постоянных взвесей. Взвесь должна содержать в себе отдельные частицы определённого размера. Затем в рабочую суспензию добавляют водный раствор танина со скоростью 2,0±0,1 мл/мин, после чего рабочая суспензия в течение 60 мин перемешивается при температуре плюс 4±2 оС.
Далее осуществляют осаждение образованных микрокапсул и фильтрование. После фильтрования микрокапсулы направляют на промывание и сушку. Выход микрокапсул, содержащих в своём составе бифидобактерии, при данной технологии составляет 77,3 %, при этом количество жизнеспособных бифидобактерий на 1 г микрокапсулы составляет 5,3·107 клеток. Микрокапсулы представляют собой частицы сферической формы размером от 60 до 120 мкм, серо-жёлтого цвета.
3.6. Исследование свойств и безопасности микрокапсул
Основными показателями к применению микрокапсул в пищевых молочных продуктах являются нетоксичность всех компонентов, используемых для их получения и польза для организма при употреблении в пищу этих продуктов.
Для этой цели были проведены исследования острой и хронической токсичности, дермонекротических свойств на животных, выполнено создание моделей среды желудка, двенадцатиперстной, тонкой и толстой кишки, экспозиции микрокапсул в течение среднего времени нахождения смешанной пищи в желудке и кишечнике, с последующим определением количества жизнеспособных бифидобактерий.
3.6.1. Результаты наблюдений и токсикологических исследований
Животные и их содержание
Исследования по оценке безопасности микрокапсул, состоящих из природных биодеградируемых полимеров, содержащих бифидобактерии, были проведены на 50 белых мышах SHK-линии обоих полов. Животные были доставлены из филиала «Андреевка» ФГБУН НЦБМТ ФМБА России, имели сертификат № 05815 от 11.05.2017 до 19.10.2017 и ветеринарное свидетельство 250 № 0860445 от 11.05.2017. Перед отправкой из филиала мыши карантинировались 21 день.
Для исследования отбирали клинически здоровых белых мышей с хорошей упитанностью, активных, подвижных, хорошо обволошенных, с нормальной окраской слизистых оболочек и оформленным стулом. Средний вес животных составлял 10–15 г.
Определение дермонекротических свойств (раздражающего действия на слизистые ткани) микрокапсул, состоящих из природных биодеградируемых полимеров, содержащих бифидобактерии, было проведено на кроликах породы советская шиншилла. Животные были доставлены из филиала «Манихино» ФГУП ОПХ России, имели ветеринарное свидетельство 250 № 0819660 от 22.11.2016. Перед отправкой из филиала животные карантинировались 30 дней.
Было проведено три серии экспериментов для определения безвредности острой и хронической токсичности, дермонекротических свойств. Сформировано 8 групп общей численностью 50 мышей и 3 кролика, из них 5 экспериментальных и 2 контрольные.
Группы животных формировались по массе тела и возрасту. Животные содержались в виварии согласно СП 2.2.1.3218–14.
Клетки для мышей из поликарбоната. Все клетки оборудованы стальными решётками-крышками с углублением для корма, в качестве подстила использовали древесные опилки лиственных пород. В комнате содержания животных поддерживались постоянные условия окружающей среды: температура 18–22 °С, 50–65 % относительная влажность, 12-часовой цикл освещения и 10-кратная смена объёма воздуха комнаты в час. Маркировка животных – групповая. Метод маркировки – мечение краской. Все время проведения исследований животные получали брикетированный корм производства ООО «Лабораторкорм». Комбикорм, предназначенный для лабораторных животных (мышей, крыс, хомяков), имеет сертификат соответствия № РОСС RU. ПТ 98 Д00405 до 07.02.2019 г. Корм сбалансирован по аминокислотному составу, минеральным веществам и витаминам, изготовлен из высококачественных компонентов. Микробиологический статус кормов соответствует «Ветеринарно-санитарным нормам и требованиям к качеству кормов для непродуктивных животных» и не оказывает негативного влияния на результаты проводимого теста. Животные получали корм без ограничения. Поение – фильтруемая водопроводная вода в стандартных питьевых бутылочках. Микробиологический статус воды соответствует СанПин 2.1.4.1074–01 «Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения». Доступ к воде свободный.
Металлические клетки для кроликов оборудованы стальными решетками-дверцами с кормушкой и поилкой. В комнате содержания животных поддерживались постоянные условия окружающей среды: температура 18–22 °С, 50–65 % относительная влажность, 12-часовой цикл освещения и 10-кратная смена объёма воздуха комнаты в час. Маркировка животных – индивидуальная. Метод маркировки – наколка на внутренней поверхности уха. Во время проведения исследований животные получали брикетированный корм производства ООО «Лабораторкорм». Комбикорм, предназначенный для лабораторных животных (кроликов и морских свинок), имеет сертификат соответствия № РОСС RU. ПС04. Н00325 до 14.05.2018 г. Корм сбалансирован по аминокислотному составу, минеральным веществам и витаминам, изготовлен из высококачественных компонентов. Микробиологический статус кормов соответствует «Ветеринарно-санитарным нормам и требованиям к качеству кормов для непродуктивных животных» и не оказывает негативного влияния на результаты проводимого теста. Животные получали корм без ограничения. Поение – фильтруемая водопроводная вода в стандартных поилках. Микробиологический статус воды соответствует СанПин 2.1.4.1074–01 «Гигиенические требования к качеству воды централизованных систем питьевого водоснабжения». Доступ к воде свободный.
Все манипуляции с животными проводили согласно правилам, принятым европейской конвекцией по защите позвоночных животных, используемых для исследований и других научных целей (European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Experimental and other Scientific Purposes (ETS 123) Strasbourg, 1986).
3.6.2. Определение безвредности и «острой токсичности»
Определение безвредности и «острой токсичности» микрокапсул, состоящих из природных биодеградируемых полимеров, содержащих бифидобактерии, осуществляли согласно МУК 4.2.2602–10. Были сформированы опытные группы 1, 2 и 3 по пять животных в каждой. Отбирали клинически здоровых белых мышей с хорошей упитанностью, активных, подвижных, хорошо обволошенных, с нормальной окраской слизистых оболочек и оформленным стулом. Средний вес животных составлял – 20±5 г. Пасту из микрокапсул, состоящих из природных биодеградируемых полимеров, приготовленную заказчиком, содержащую бифидобактерии в концентрации 1·108 КОЕ микробных клеток в 1 г, разводили физиологическим раствором С080812. Было приготовлено